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作者王军,马开主编
出版社郑州大学出版社
ISBN9787564582982
出版时间2022-02
装帧平装
开本16开
定价79元
货号11524367
上书时间2026-01-24
第一章脑缺血模型
第一节大鼠脑缺血模型
一、大鼠开颅法局灶性脑缺血模型
二、大鼠线栓法局灶性脑缺血模型
三、大鼠光化学法局灶性脑缺血模型
四、大鼠栓塞法局灶性脑缺血模型
五、大鼠氟化铁诱导法局灶性脑缺血模型
六、大鼠四动脉阻断法全脑缺血模型
七、大鼠三动脉阻断法全脑缺血模型
八、大鼠二动脉阻断法全脑缺血模型
九、大鼠内皮素诱导法局灶性脑缺血模型
第二节小鼠脑缺血模型
一、小鼠开颅法局灶性脑缺血模型
二、小鼠线栓法局灶性脑缺血模型
三、小鼠氯化铁诱导法局灶性脑缺血模型
四、小鼠全脑缺血再灌注模型
第三节兔脑缺血模型
一、兔眼眶λ颅法局灶性脑缺血模型
二、兔线栓法局灶性脑缺血模型
三、兔介λ自体血栓法局灶性脑缺血模型
四、兔介λ微导丝栓塞法局灶性脑缺血模型
五、兔自体血栓颈动脉注射法局灶性脑缺血模型
第四节 沙土鼠脑缺血模型
一、沙土鼠单侧颈总动脉阻断法脑缺血模型
二、沙土鼠双侧頭总动脉阻断法前脑缺血模型
三、沙±窊榷动脉阻断法后脑缺血模型
四、沙±鼠大脑中动脉陧断法局灶性脑缺血模型
第五节犬脑缺血模型
一、犬开颅法局灶性脑缺血模型
二、犬微栓子介入法局灶性脑缺血模型
第六节猫脑缺血模型
一、猫局灶性脑缺血模型
二、猫全脑缺血再灌注模型
第二章脑出血模型
第一节脑内注入胶原酶诱导法脑出血模型
一、大鼠脑内注入胶原酶诱导法脑出血模型
二、小鼠脑内注入胶原酶诱导法脑出血模型
第二节自体血脑内注射法脑出血模型
一、大鼠自体血脑内注射法脑出血模型
二、兔自体血脑内注射法脑出血模型
三、小鼠自体血脑内注射法脑出血模型
四、小型猪自体血脑内注射法脑出血模型
五、犬自体血脑内注射法脑出血模型
第三节自发性脑出血模型
一、易卒中型自发性高血压大鼠模型
二、易卒中型肾血管性高血压大鼠模型
第四节其他脑出血模型
一、大鼠微球囊充盈法脑出血模型
二、犬大脑中动脉破裂脑出血模型
三、兔创伤性脑出血模型
第三章血管性认知障碍模型
第一节大鼠血管性认知障碍模型
一、大鼠颈动脉阻断法认知障碍模型
二、大鼠颈动脉狭窄法认知障碍模型
三、大鼠三动脉阻断法认知障碍模型
四、大鼠四动脉阻断法认知障碍模型
五、大鼠血管栓塞法认知障碍模型
六、大鼠大脑中动脉阻断法认知障碍模型
第二节小鼠血管性认知障碍模型
一、小鼠颈动脉狭窄法认知障碍模型
二、小鼠反复缺血再灌注法认知障碍模型
三、小鼠颈动脉阻断法认知障碍模型
第四章蛛网膜下腔出血模型
第一节 血管内穿刺法蛛网膜下腔出血模型
―、大鼠血管內穿剌法蛛网膜下腔出血模型
二、小鼠血管内穿剌法蛛网膜下腔出血模型
亖、兔血管內穿剌法蛛网膜下腔出血模型
第二节 脑池注血法蛛网膜下腔出血模型
一、大鼠枕大池注血法蛛网膜下腔出血模型
二、大鼠视交叉池注血法蛛网膜下腔出血模型
三、大鼠其他脑池注血法蛛网膜下腔出血模型
四、兔脑池注血法蛛网膜下腔出血模型
五、犬脑池注血法蛛网膜下腔出血模型
第五章颅内动脉瘤模型
第一节大鼠颅内动脉瘤模型
第二节兔颅内动脉瘤模型
一、兔静脉移植法颅内动脉瘤模型
二、兔弹性酶诱导法颅内动脉瘤模型
第三节犬颅内动脉瘤模型
一、犬静脉移植法颅内动脉瘤模型
二、犬弹性酶诱导法颅内动脉瘤模型
三、犬介入法颅内动脉瘤模型
第六章颅内静脉窦血栓形成模型
第一节大鼠颅内静脉窦血栓形成模型
一、大鼠上矢状窦单纯结扎法颅内静脉窦血栓形成模型
二、大鼠上矢状窦永久结扎加促凝法颅内静脉窦血栓形成模型…
三、大鼠光化学法联合凝血酶注射颅内静脉窦血栓形成模型………………204
第二节兔颅内静脉窦血栓形成模型
一、兔上矢状窦FeCl2贴敷结合凝血酶注入法颅内静脉窦血栓形成模型
二、兔上矢状窦临时夹闭加促凝法颅内静脉窦血栓形成模型
第三节猪颅内静脉窦血栓形成模型
一、猪介入法颅内静脉窦栓塞模型
二、猪介入结合凝血酶注射法颅內静脉窦血栓形成模型
第四节猫颅内静脉窦血栓形成模型
附录常用英文缩略词
第一节大鼠脑缺血模型
―、大鼠开颅法局灶性脑缺血模型
【基本原理】
大脑中动脉(middle cerebral artery,MCA)是人群脑卒中的多发部位,采用开颅直接阻断大鼠近端MCA的方法,造成MCA支配区脑组织缺血为主的局灶性脑缺血模型(middle cerebral artery occlusion,MCAO)。
【实验材料】
1.药品试剂 ①2,3,5-氯化三苯基四氮唑(2,3,5-triphenyl tetrazolium chloride,TTC):用磷酸缓冲液配成1%的染液(pH值7.4)。②麻醉药物:盐酸氯胺酮注射液,水合氯醛或戊巴比妥钠等。③10%甲醛溶液或4%多聚甲醛溶液。
2.仪器设备手术显微镜,牙科钻,咬骨钳,常规手术器械,条件反射箱等。
3.实验动物成年SD或Wistar大鼠,雌雄兼用,体重250~300g。
【方法步骤】[1-2]
1.术前准备将动物用盐酸氯胺酮注射液腹腔注射麻醉(100mg/kg),置左侧卧位固定于手术台上,头右侧手术部位剪毛,常规皮肤碘伏与乙醇消毒。
2.动脉阻断沿右侧耳眼连线中点纵行切开皮肤,分离颞肌,用咬骨钳咬断额弓,在颧弓根前方用牙科钻行颅骨钻孔,在手术显微镜下分别用眼科剪和眼科镊剪开并小心撕开硬脑膜,暴露MCA。在大脑下静脉和嗅束间用11-0号外科无创伤缝合线结扎MCA,血流中断后于远侧切断,假手术组大鼠用针线穿过MCA,不结扎和不切断血管。分层缝合肌肉和皮肤。
3.术后处理术后3d,每天碘伏消毒皮肤切口。
【观察指标】
1.神经病学分级手术24h后,参照文献[3]方法,根据动物运动等行为表现进行神经病学分级。每天1次,观察4d。
0级:行为正常,步态平稳,无神经损伤症状。
I级:提尾时,手术对侧前肢屈曲。
Ⅱ级:提尾时,手术对侧前肢屈曲,抓力减弱。
Ⅲ级:自主运动无方向性,提尾时向手术对侧旋转。
Ⅳ级:自主运动时,向手术对侧旋转。
2.被动性条件反射4)动物于造模前分别置于条件反射箱的明室内,进行被动性条件反射训练。大鼠因其嗜暗习性进入暗室,当动物四肢均进入暗室时,通以36V的交流电,受电击后逃离暗室,回到明室内,记录潜伏期,将潜伏期大于30s的大鼠别除。造模后重复测试,测定并记录动物被动性条件反射潜伏期和5min的错误次数。
3.脑梗死面积测量[5]动物被动性条件反射测试后,麻醉下断头取脑,迅速置于
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